Чувствительность к флуксапироксаду (Серкадис) популяции Venturia inaequalis из промышленных насаждений Юга России

Наиболее распространенным патогеном садов яблони в условиях умеренного климата является возбудитель парши – <i>Venturia inaequalis</i>. Традиционная защита сада, основанная на многократном применении фунгицидов, остаётся актуальной. Широкое применение фунгицидов с узконаправленным механизмом действия приводит к постепенному отбору устойчивых биотипов патогена, росту их доли в популяции и, впоследствии, к потере эффективности химических препаратов. Мониторинг чувствительности возбудителя к фунгицидам, в том числе новым, появившимся на рынке пестицидов сравнительно недавно, таким, например, как ингибиторы сукцинатдегидрогеназы (SDHI – succinate dehydrogenase inhibitor), является важным аспектом при разработке антирезистентной программы защиты сада. В данной работе была оценена чувствительность гриба к флуксапироксаду с использованием дискриминационной концентрации in vitro на основе показателя относительного роста мицелия (RG – relative growth) на твёрдой питательной среде. Моноспоровые изоляты патогена выращивали на картофельно-глюкозном агаре с добавлением 0,25 мкг/мл флуксапироксада и без него. Всего было изучено 106 изолятов возбудителя, собранных из двух промышленных садов яблони. Средние значения RG у этих популяций существенно различались. Для насаждений, имевших историю применения действующего вещества, было показано присутствие изолятов со значениями относительного роста мицелия RG выше 70 и 80 %, что указывает на развитие резистентности в них. Для одного из садов доля изолятов при дискриминационном пороге RG > 80 % оказалась в два раза выше, чем для другого. В связи с тем, что фунгициды SDHI и в частности флуксапироксад относятся к фунгицидам узконаправленного действия, велика вероятность развития устойчивости к ним у <i>Venturia inaequalis</i>. Насколько нам известно, впервые в России в проведённом нами исследовании было показано наличие форм патогена со сниженной чувствительностью к данному действующему веществу. Соблюдение антирезистентных рекомендаций FRAC при использовании моносайтовых фунгицидов и постоянный мониторинг чувствительности патогена к ним является важным условием их долговременного использования.

1. Насонов А. И., Супрун И. И. Парша яблони: особенности возбудителя и патогенеза. Микология и фитопатология. 2015;49(5):275-285.

2. MacHardy W. E. Apple Scab: Biology, Epidemiology, and Management. St Paul: MN, USA: American Phytopathological Society, 1996, 570 р.

3. Gur L., Levy K., Farber A., Frenkel O., Reuveni M. Delayed Development of Resistance to QoI Fungicide in Venturia inaequalis in Israeli Apple Orchards and Improved Apple Scab Management Using Fungicide Mixtures. Agronomy. 2021;11(2):396. https://doi.org/10.3390/agronomy11020396

4. Jaklova P., Kloutvorova J., Cmejla R. A real-time PCR quantitative analysis of the Venturia inaequalis cytb gene G143A mutation and its prevalence in the Czech Republic. Eur J Hortic Sci. 2020;85(3):169-175. https://doi.org/10.17660/eJHS.2020/85.3.4

5. Frederick Z. A., Villani S. M., Cooley D. R., Biggs A. R., Raes J. J., Cox K. D. Prevalence and stability of qualitative QoI resistance in populations of Venturia inaequalis in the northeastern United States. Plant Dis. 2014;98:1122-1130. DOI: 10.1094/PDIS-10-13-1042-RE

6. Насонов А. И., Якуба Г. В., Лободина Е. В. Длительное сохранение резистентности к карбендазиму у Venturia inaequalis в Краснодарском крае (Россия). Микология и фитопатология. 2022;56(5):374-378. DOI: 10.31857/S0026364822050087

7. Насонов А. И., Якуба Г. В., Астапчук И. Л. Чувствительность краснодарской популяции Venturia inaequalis к дифеноконазолу, ингибитору деметилирования стеринов. Микология и фитопатология. 2021;55(4):297-308. DOI: 10.31857/S0026364821040103

8. Sierotzki H. Scalliet G. A review of current knowledge of resistance aspects for the next-generation succinate dehydrogenase inhibitor fungicides. Phytopathology. 2013;103:880-887. https://doi.org/10.1094/PHYTO-01-13-0009-RVW

9. Toff olatti S. L., Venturini G., Bianco P. A. First report of SDHI resistant strains of Venturia inaequalis from commercial orchards in Northern Italy. Plant Disease. 2016;100(11):2324. https://doi.org/10.1094/PDIS-03-16-0361-PDN

10. Hu M-J., Fernández-Ortuño D., Schnabel G. Monitoring Resistance to SDHI Fungicides in Botrytis cinerea from Strawberry Fields. Plant Dis. 2016;100:959-965. https://doi.org/10.1094/PDIS-10-15-1210-RE

11. Fernández-Ortuño D., Pérez-García A., Chamorro M., de la Peña E., de Vicente A., Torés J. A. Resistance to the SDHI Fungicides Boscalid. Fluopyram. Fluxapyroxad. and Penthiopyrad in Botrytis cinerea from Commercial Strawberry Fields in Spain. Plant Dis. 2017;101:1306-1313. https://doi.org/10.1094/PDIS-0117-0067-RE

12. Mallik I., Arabiat S., Pasche J. S., Bolton M. D., Patel J. S., Gudmestad N. C. Molecular characterization and detection of mutations associated with resistance to succinate dehydrogenase-inhibiting fungicides in Alternaria solani. Phytopathology. 2014;104:40-49. https://doi.org/10.1094/PHYTO-02-13-0041-R

13. Wang Y., Duan Y., Wang J., Zhou M. Mol. A new point mutation in the iron–sulfur subunit of succinate dehydrogenase confers resistance to boscalid in Sclerotinia sclerotiorum. Plant Pathol. 2015;16:653-661. https://doi.org/10.1111/mpp.12222

14. Fiaccadori R., Battistini G. Biological Methodologies on SDHI Fungicides to Assess Reductions of Sensitivity and Activity on Venturia inaequalis and Cross-Resistance Tests. American Journal of Plant Sciences. 2021;12(7):1124-1134. DOI: 10.4236/ajps.2021.127078

15. Villani S. M., Ayer K., Cox K. D. Molecular characterization of the sdhB gene and baseline sensitivity to penthiopyrad, fl uopyram, and benzovindifl upyr in Venturia inaequalis. Plant Disease. 2016;100(8):1709-1716. https://doi.org/10.1094/PDIS12-15-1512-RE

16. Ayer K., Villani S. M., Choi M. W., Cox K. Characterization of the VisdhC and VisdhD genes in Venturia inaequalis. and sensitivity to fl uxapyroxad, pydifl umetofen, inpyrfl uxam and benzovindifl upyr. Plant Dis. 2019;103:1092-1100. https://doi.org/10.1094/PDIS-07-18-1225-RE

17. Ayer K. M., Choi M. W., Smart S. T., Moff ett A. E., Cox K. D. Th e Eff ects of Succinate Dehydrogenase Inhibitor Fungicide Dose and Mixture on Development of Resistance in Venturia inaequalis. Applied and Environmental Microbiology. 2020;86(17):e01196-20. https://aem.asm.org/content/aem/86/17/e01196-20.full.pdf

18. Köller W., Parker D. M., Turechek W. W., Avila-Adame C., Cronshaw K. A Two-Phase Resistance Response of Venturia inaequalis Populations to the QoI Fungicides Kresoxim-Methyl and Trifl oxystrobin. Plant Dis. 2004;88:537-544. https://doi.org/10.1094/PDIS.2004.88.5.537

19. Насонов А. И. Новый способ получения культуры Venturia inaequalis из аскоспор. Микология и фитопатология. 2019;53(1):46-48. https://doi.org/10.1134/S0026364819010094

20. Интернет-ресурс «Statskingdom». URL. https://www. statskingdom.com/320ShapiroWilk.html.

21. Statistical online calculator: SciStatCalc: Two-sample Kolmogorov-Smirnov Test Calculator. URL https://scistatcalc. blogspot.com/2013/11/kolmogorov-smirnov-test-calculator.html

22. Mondino P., Casanova L., Celio A., Bentancur O., Leoni C., Alaniz S. Sensitivity of Venturia inaequalis to Trifl oxystrobin and Difenoconazole in Uruguay. Journal of Phytopathology. 2015;163. (1) 1-10. https://doi.org/10.1111/jph.12274

23. Köller W., Wilcox W. F., Barnard J., Jones A. L., Braun P. G. Detection and Quantifi cation of Resistance of Venturia inaequalis Populations to Sterol Demethylation Inhibitors. Phytopathology. 1997;87:184-190. https://doi.org/10.1094/PHYTO.1997.87.2.184

24. Pfeufer E. E., Ngugi H. K. Orchard factors associated with resistance and cross resistance to sterol demethylation inhibitor fungicides in populations of Venturia inaequalis from Pennsylvania. Phytopathology. 2012;102(3):272–282. https://doi.org/10.1094/PHYTO-04-11-0117